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“罕见”CYP酶体系如何完善酶表型鉴定?

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  • 2024-05-06

药物相互作用(Drug-drug interaction, DDI)指的是同时使用多种药物时,药物之间产生的药代动力学和药效动力学改变。在药物相互作用中,存在着“施害药”与“受害药”,前面的文章中以代谢酶诱导研究(解读 | NMPA,FDA药物相互作用研究技术指导原则(一)──代谢酶介导的药物相互作用评估策略)为例描述过评估候选化合物成为“施害药”的可能性,本文主要结合指导原则的变更描述如何更完善地评估参与作为“受害药”的候选化合物代谢的主要代谢酶。据报道约75%的上市药物主要通过代谢途径从体内清除,其中约48%的药物经细胞色素P450(Cytochrome P450, CYP)酶代谢,各CYP贡献占比约1%-40%,CYP3A占比最大;约24%的药物经非CYP代谢。因而本文着重讨论如何建立“罕见”CYP酶鉴定体系,以完善CYP酶表型研究。


主要从以下几个方面来介绍如何完善候选化合物的代谢酶表型鉴定


  1. 缘何需要建立更完善的评估体系

  2. 何时需要开展“罕见”CYP酶鉴定

  3. 如何建立“罕见”CYP酶的鉴定体系

  4. “罕见”CYP酶鉴定体系建立的结果展示

  5. “罕见”CYP酶鉴定体系的应用


一、缘何需要建立更完善的评估体系


一个化合物若以代谢作为体内主要的清除途径,且参与代谢的酶种类较为单一,那么发生显著药物-药物相互作用的概率就会越大。因此,药物代谢酶表型鉴定研究(Phenotyping, PNT)是临床前药物代谢研究中的重要内容之一。


01 从指导原则的迭代看CYP酶研究范围           


2006年,美国FDA将CYP1A2、CYP2C8、CYP2C9、CYP2C19、CYP2D6和CYP3A纳入PNT的考察对象;2012年,PNT的考察对象分为两个梯度:梯度1,常规的7CYPs酶(即CYP1A2、CYP2B6、CYP2C8、CYP2C9、CYP2C19、CYP2D6和CYP3A);梯度2,“罕见”CYPs酶(未明确指出哪些酶)和Non-CYPs的I相代谢酶(如FMO,AO,XO等);2020年,FDA终稿文件中提出,体外表型实验先对CYP1A2、CYP2B6、CYP2C8、CYP2C9、CYP2C19、CYP2D6和CYP3A进行常规评估,以确定哪些酶参与了受试化合物的代谢。如果以上的酶没有显著催化受试化合物的代谢,则建议进一步确定哪些额外的酶参与了代谢,这些额外的酶包括但不限于:


1)“罕见”CYP酶,包括CYP2A6、CYP2J2、CYP4F2和CYP2E1

2)其他的I相代谢酶

3)II相代谢酶



02 “罕见”酶也可以是“主代”酶


指导原则(2020)中指出,根据体外药物代谢酶表型研究和人体药代动力学数据,如果某一特定的代谢酶对受试药物的清除占25%以上的比例,那么认为该酶对受试药物的清除具有显著贡献。在这种情况下,应该使用该酶的强抑制剂和诱导剂进行临床药物-药物的相互作用研究。故找到受试药物主要代谢酶在药物-药物相互作用中尤为关键。


随着小分子实体的越来越多,除了常规的7CYPs酶,一些“罕见”CYP酶(如CYP2A6、CYP2J2、CYP4F2、CYP2E1和CYP3A5)也在药物代谢中扮演主要代谢酶的角色。如上市药物盐酸芬戈莫德(Fingolimod Hydrochloride、商品名:Gilenya)或在研药物吉西他滨的前药(Compound-3)。


结合指导原则,上市药物及在研药物的研发趋势及各CYP酶在肝脏中表达丰度,参与药物代谢的概率,我们确定本次“罕见”CYP酶考察范围为:CYP2A6、CYP2J2、CYP4F2、CYP2E1和CYP3A5。


二、何时需要开展“罕见”CYP酶鉴定


用于CYP酶表型鉴定的方法主要有化学抑制法、重组人源CYP同工酶法、抗药物代谢酶抗体法和相关性分析,现阶段主要以前两种实验手段为准。


化学抑制法:通常在加入与不加入一系列CYP酶亚型选择性化学抑制剂的情况下,分别测定人肝微粒体对药物的代谢活性。考察人肝微粒体中CYP酶亚型被选择性抑制后,药物代谢的受影响情况,常以相对抑制百分率表示。


重组人源CYP同工酶法:分别测定一系列CYP同工酶对药物的代谢速率,并比较不同CYP同工酶(酶亚型)对药物的代谢活性。通过代入相应CYP酶亚型在微粒体中的含量进行计算,评价每一种CYP酶亚型对药物代谢的相对贡献率。


一般情况下,结合化学抑制法及重组人源CYP同工酶法的实验结果以表征受试化合物或其代谢产物的主要代谢酶。但在实际研究中,化学抑制法及重组人源CYP同工酶法实验结果可能会存在相互矛盾的现象,不能明确得出药物代谢的主要酶。在这种情况下,我们需要开展“罕见”CYP酶表型鉴定研究。


三、如何建立“罕见”CYP酶的鉴定体系


本次研究从酶生物学特性出发,选择酶相应的特异性底物,测定底物的相关参数,建立稳定,可靠,可重复的“罕见”CYP酶PNT检测体系。下面主要以CYP3A5及CYP2J2为例,介绍“罕见”CYP酶PNT体系搭建的相关考量。


01 例1


CYP3A5属于CYP3A家族,与CYP3A4共同参与大部分药物的代谢,并在其中起主要作用(图1)。CYP3A5也是肝脏中表达丰度最高的CYP酶之一(图2),故CYP3A5需要被单独进行研究。


图1:参与临床药物代谢的CYP450酶的比例


图2:CYP450酶表达丰度


相关文献对CYP3A5的研究路径(图3)已进行报道,当体外表型实验结果表明,受试化合物或其主要初始代谢产物的代谢酶为CYP3A时,受试化合物或其主要初始代谢产物建议开展关于CYP3A4/3A5的表型鉴定实验。首先在重组酶CYP3A5体系中进行考察,其次采用某些抑制剂(如CYP3cide)佐证这一实验结果,详细见下方流程图。因CYP3A4与CYP3A5的氨基酸同源性高达84.1%,底物具有高度的重合性。故我们从底物的敏感性出发,发现Midazolam对CYP3A5的亲和力较强,故选择Midazolam作为CYP3A5的底物,测定Midazolam的代谢产物1-Hydroxymidazolam的酶促动力学参数(Km),从而建立CYP3A5重组酶检测体系。


图3:CYP3A5研究流程图


02 例2


CYP2J2 mRNA的表达水平在小肠,心脏中最高,在肝脏中表达水平相对较低。CYP2J2与CYP3A4的活性空腔存在部分的重合(图5),底物具有一定的相似性;其次,酮康唑(Ketoconazole)作为CYP3A的阳性抑制剂,在一定条件下,也会抑制CYP2J2的活性,以上两点给体外酶表型鉴定实验(Phenotyping, PNT)带来挑战。本研究以文献提供的Astemizole作为CYP2J2的表征性底物,测定其固有清除率(CLint),建立CYP2J2特有的重组酶检测体系,以获得更准确的体外酶表型鉴定实验结果。


图4:CYP2J2活性位点空腔(A),CYP3A4活性位点空腔(B),CYP2J2与CYP3A4重叠的活性位点(C)


其余“罕见”CYP酶(CYP2A6、CYP4F2和CYP2E1)均是测定其特异性底物代谢产物的酶促动力学参数(Km),建立对应的重组酶检测体系,相关实验设计过程不再做详细描述。


四、“罕见”CYP酶鉴定体系建立的结果展示


在优化的线性条件下,我们测定CYP2A6、CYP4F2、CYP2E1和CYP3A5特异性底物代谢产物酶促动力学参数(Km)及CYP2J2特异性底物固有清除率(CLint),具体实验结果如下表(见表1-表2)。根据文献中通用的两倍判断范围为标准,CYP2A6、CYP4F2、CYP2E1、CYP3A5和CYP2J2的检测值接近于文献报道值或在文献报道值范围内。由此,我们建立了WuXi AppTec“罕见”CYP酶检测体系。


实验结果展示如下:

注:蓝点代表WuXi AppTec检测值,红点代表文献值


注:蓝点代表WuXi AppTec检测值,红点代表文献值


CYP2J2文献中重组酶浓度为100pmol/mL,WuXi AppTec采用此条件,对药物(Astemizole)清除率进行研究,发现在5min内,该药物的剩余量已小于10%,可能存在固有清除率低估的情况。WuXi AppTec调整了酶浓度,测得的药物(Astemizole)固有清除率高于文献值。


五、“罕见”CYP酶鉴定体系的应用


01 应用案例1


对于Compound A的初始代谢产物M1的生成,特异性化学抑制法及重组人细胞色素P450酶代谢法实验结果存在相互矛盾的现象。特异性化学抑制法实验结果表明,CYP3A是代谢产物M1的主要代谢酶;但是,重组人细胞色素P450酶代谢法实验结果表明,CYP2C8是代谢产物M1的主要代谢酶。后期加入了“罕见”酶(CYP3A5)的考察,重组人细胞色素P450酶实验结果表明:Compound A的代谢产物M1的主要代谢酶是CYP3A5,CYP2C8仅作为代谢产物M1的次要代谢酶,此结果与化学抑制法完全一致,下图主要展示以重组酶为基质,考察每个CYP酶对产物生成的贡献率。


图5:7CYPs对代谢产物M1生成的贡献比例

图5:7CYPs对代谢产物M1生成的贡献比例


图6:8CYPs对代谢产物M1生成的贡献比例

图6:8CYPs对代谢产物M1生成的贡献比例


02 应用案例2


对于Compound B的主要代谢产物M1的生成,特异性化学抑制法及重组人细胞色素P450酶代谢法实验结果存在相互矛盾的现象。特异性化学抑制法实验结果表明,CYP3A是代谢产物M1的主要代谢酶;但是,重组人细胞色素P450酶代谢法实验结果表明,CYP2C9是代谢产物M1的主要代谢酶。结合“罕见”CYP酶的生物学特性,加入“罕见”CYP酶(CYP3A5、CYP4F2和CYP2J2)的考察,发现CYP2J2才是代谢产物M1的主要代谢酶。下图8主要展示以重组酶为基质,考察每个CYP酶对产物生成的贡献率。下图9主要展示以重组酶为基质,代谢产物M1在CYP2J2与CYP2C9中的相对生成速率的比值。


图7:7CYPs对代谢产物M1生成的贡献比例

图7:7CYPs对代谢产物M1生成的贡献比例


图8:M1在重组酶CYP2J2与CYP2C9中相对生成速率的比值


以上两个案例表明:“罕见”CYP酶体系的加入进一步挖掘PNT研究中隐藏的一些重要信息,为受试药物临床实验设计提供更可靠的依据。


结语  


药物代谢酶表型鉴定研究(Phenotyping, PNT),结合化学抑制法和重组人源CYP同工酶法,鉴定出参与药物代谢的相关酶表型,为先导化合物的结构优化、候选化合物的临床实验设计提供重要的依据,是临床前药物代谢研究的中重要考察内容之一。通过以上的研究,药明康德DMPK成功的搭建了“罕见”CYP酶鉴定体系,优化了药物代谢酶表型研究(Phenotyping, PNT),更准确的找到参与药物代谢的CYP酶。


药明康德DMPK依托在中国(上海、苏州、南京和南通)和美国(新泽西)的研发中心,提供从早期筛选、临床前开发、到临床研究阶段的综合型药代动力学服务,助力您快速推进药物研发流程。拥有上千人的研发团队,服务超1500家全球客户,具有超过十五年的新药申报经验,已成功支持超过1200个新药临床研究申请(IND)。 


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作者:刘欢,姜丽芳,鞠武建,陈根富

编辑:钱卉娟,方健

设计:倪德伟

参考

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